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双修饰RNA体外合成试剂盒图片
产品货号:
KL230802
中文名称:
双修饰RNA体外合成试剂盒
英文名称:
Real-Time Double Modified T7 in vitro Transcription Kit
产品规格:
50T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

用体外转录方法制备的RNA是RNA药物和RNA疫苗的重要原料,但研究发现如果在体外转录时用5mCTP(5-methylcytosin-5'-triphosphate)和三磷酸假尿苷(N1-methyl-pseudouridine-5'-triphosphate)分别替代CTP和UTP,得到的修饰RNA翻译效果提高40多倍,免疫性也大为降低。为此本公司在常规T7体外转录试剂的基础上,升级开发了本制品。




  • 用5mC-CTP代替CTP,用N1-Me-pUTP代替UTP,并且分开而不是以混合液的方式提供,方便用户制备单一种修饰或者双重修饰的RNA。
  • 即开即用,用户只需提供含T7启动子的DNA模板即可。
  • 提供体外转录专用荧光染料,加入到体系中可以实时监控反应的进行,便于优化条件。实验结束后不需要浪费宝贵的样本进行电泳。如果担心染料对后续实验有影响,也可以不加。
  • 模版DNA可以是线性化的质粒DNA,也可以是PCR扩增产物。
  • 可以合成的RNA的最佳长度在20nt到2000nt之间。
  • 产品配方经过精心优化,1μg质粒DNA模版可以在3小时内合成大约30μg修饰RNA(具体跟模板DNA序列,长度,纯度等相关)。
  • 得到的RNA可以用于RNA结构研究、核酶生物化学、体外翻译、RNA-蛋白质相互作用、反义技术、SELEX技术和RNA干扰(RNAi)等实验。



组分规格
2×双修饰T7转录预配液0.5mL 0.5mL绿盖管
体外转录专用荧光染料50μL 0.5mL棕色盖
T7 RNA聚合酶-RI混合液50μL 0.5mL红盖管
RNase-free水1mL

保存:-20℃,有效期1年。


本试剂盒足够50次20μL体系的修饰碱基体外转录实验。


Tris饱和酚、氯仿、RNase-free 75%乙醇。


一、制备DNA模板
本试剂盒不含所需试剂,此处信息仅供参考。PCR片段和质粒DNA都可以用作体外转录的模板,但是必须注意以下几点:
  1. 必须使用线性化的DNA。如果是质粒DNA,则必须先用适当的限制性内切酶切成线状。
  2. 需要转录的DNA序列的上游必须有T7启动子。如果模板是PCR产物,则可以在设计引物时将T7启动子序列(5' TAA TAC GAC TCA CTA TAG GG 3')加上。如果是将DNA片段克隆到载体上,则需要选择有T7启动子的载体,并且克隆位点必须位于T7启动子下游。
  3. 需要转录的DNA序列的下游端最好不要是3'突出。如果是3'突出(比如选择了Pst I来线性化质粒),则最好用T4 DNA聚合酶修平。
  4. 必须保证DNA模板中没有RNase。由于提取质粒DNA的过程中一般要使用大量的RNase A,因此质粒DNA一般都有严重的RNase A污染,所以在用作模板前,最好采取胶回收得方法回收质粒DNA。并且加入少量总RNA一起保温,然后电泳检测RNA是否被降解,以此来判断纯化的DNA模板是否有残留RNase A。如果有RNase污染,则必须反复酚-氯仿抽提去除残留的RNase,然后再乙醇沉淀质粒DNA。


二、体外转录反应
  1. 按下表设置体外转录反应:
    成分样品管阴性对照管
    DNA模板50ng PCR片段或1μg线状质粒不加
    2×双修饰T7转录预配液10μL10μL
    体外转录专用荧光染料1μL1μL
    T7 RNA聚合酶-RI混合液1μL1μL
    RNase-free水至20μL至20μL
    • 此为20μL反应体系的用量,对其他反应体系,各成分的用量可以按比例增减。修饰T7转录预配液已经含有修饰核苷酸。
  2. 在荧光定量PCR上37℃保温4小时。每分钟采集一次SYBR通道的荧光信号。如果没有加体外转录专用荧光染料,可以不采集荧光信号。不一定要跑慢4个小时,可以在荧光信号到达平台期后停止反应。
  3. 如果没有加荧光染料,反应结束后需要取1~3μL电泳,此时最好用DNA模板做电泳对照。电泳时比阴性对照多出的条带就是扩增得到的RNA(由于合成的RNA长度不均匀,即使长度均匀,但由于自生形成发夹结构,泳动速度也不一致,所以电泳所得RNA条带一般都不是清晰,而是比较弥散的电泳条带。但由于RNA是单链,分子量比同样长度的DNA小一倍,因此RNA一般比其双链DNA模板电泳速度更快。
  4. 如需去除DNA模板,需要另购线状DNA清除剂。最好不要实用DNase法。
  5. 再用自备的RNA纯化试剂盒纯化修饰RNA。
  6. 最后用自备的单链RNA定量试剂盒测定修饰RNA的浓度。
  7. 将纯化的RNA放-80℃保存。



  • 没有RNA产物。
    最常见原因是模板有RNase污染,可用纯化好的RNA跟模板DNA一起保温再电泳,再检测其是否有污染。
  • RNA产量低。
    最常见的原因是DNA模板。在转录序列的第一个和第二个碱基最好都是G,在前14个碱基内避免有U存在。
  • RNA长度比预期的短。
    可能是模板序列中有T7 RNA聚合酶的终止序列。可以改用SP6体外转录试剂盒(启动子也必须改成SP6启动子)。
  • RNA长度比预计的长。
    T7 RNA聚合酶跟Taq DNA聚合酶一样,有不依赖于模板的加尾功能,最多有一半的RNA可以带一个或两个碱基的尾巴。如果RNA长度比预计的长很多,使用的模板又是质粒DNA,则可能是质粒线性化不彻底。
  • 5'单磷酸还是三磷酸。
    如果使用GTP,则得到的RNA是三磷酸,体外转录时如果保温时间太长(如12小时),则有50%的三磷酸会变成单磷酸。如果在转录体系中加入GMP,则T7 RNA聚合酶将优先使用GMP,所得RNA产物中5'端是单磷酸的比例将大大增加。
  • 用体外转录试剂盒如何得到带帽RNA。
    需加入带帽NTP类似物即可,但由于竞争抑制,效果不高。另一方法是使用本公司的加帽试剂盒。

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